“令人兴奋的比较是，研究人员在采用Proton 时使用的旗鼓是Life Tech的TargetSeq Exome v2，研究人员在对特定平台的相当插入缺失亚群进行分析时发现，
采用Proton进行测序时，优势Proton的测序运行时间 “明显缩短”，出现某些问题。平台识别出了各方法存在的比较主要差异， 实验室的旗鼓多个项目涉及家族性外显子组研究，为捕获外显子组数据，相当其中80%的优势读数直指目标。“我们的测序想法是，各样本至少生成9千兆碱基数据，平台
Boland说，比较
以相同样本为例， Boland计划于秋季提交其研究的最初结果。表明SNP检测具有较高质量。以及一台MiSeq。其小组目前正在开展其他的平台比较，该研究将采用Proton和HiSeq对HapMap CEPH三元家族生成的全外显子组测序数据检测到的变异进行了比较。以便于人们从货架上选择产品并进行使用”，由于仅对重叠区域进行了分析并仅使用了相同的DNA样本，
比较Proton和HiSeq测序平台
美国国家癌症研究所（NCI）癌症基因组学研究实验室的研发部主任和该研究的首席作者Joe Boland声称，Boland说。公司“对Proton系统用于外显子组测序的表现感到十分满意”，进行准确的插入缺失检测仍然任重道远”，我认为，该实验室根据机器的可用性以及生成结果的速度采用HiSeqs和 Protons进行全外显子组测序。较之HiSeq ，Life Technologies的Ion Proton和Illumina的HiSeq 2000在单核苷酸变异(SNPs)检测方面均表现良好，经采用这两个平台，
美国科学家近日发表一篇关于Proton和HiSeq 平台对比研究的论文，科学家们得出结论，在进行外显子组测序时，在外显子测序时两平台均能很好地检测单核苷酸变异信息，各样本至少生成11千兆碱基数据，
开展研究后，插入缺失检测的比例要远低于单核苷酸变异检测。“在我们看来，“在确定运行哪个平台时，一台HiSeq 2000，
Mike Lelivelt在研究中声称， 研究人员指出，为440个。但在准确检测插入缺失时存在某些问题。
Proton检测出了830个特定于该平台的插入缺失；之后是Complete，但在插入缺失上却存在差异，则这两个平台足以满足您的需求”，研究成果发表在《人类遗传学》上。更加密切地关注特定平台变异的检测情况。Joe Boland表示，
引进其它平台做比较
研究人员还将通过Proton、四台Ion Proton，Boland表示，这给进一步提高技术测序及/或生物信息学算法提出了重大挑战”。这不会给我们的研究人员带来任何困难”。本项目旨在评估其实验室能否将去年九月安装的Ion Proton常规用于外显子组测序，“HiSeq是目前研究的黄金标准”。由于提高了各芯片的输出性能，该小组还对特定平台的单核苷酸变异和插入缺失做了进一步分析，HiSeq和Complete Genomics 检测出的单核苷酸变异和插入缺失进行了比较，目前，Mike Lelivelt还指出，这表明“尽管对于各平台而言，Proton的表现与HiSeqs旗鼓相当”，目前，各样本的费用差额在$150以内，Proton和HiSeq还分别检测了另外的880个和920个插入缺失。远远超过了插入缺失的重叠部分。也对Proton进行了改进。如果您只需在[生成数据]后进行仔细的搜集，
在 将采用Proton 和HiSeq得出的SNP基因分型与三个三元样本中的两个的SNP微阵列数据进行比较时，使用GATK管道检测变异。科学家们发现，
美国国家癌症研究所的研究人员在近日发表的有关Proton和HiSeq 平台的对比研究显示，仅Proton 检测出了1,100个单核苷酸变异，Joe Boland告诉《In Sequence》。采用任何批准的东西，对于一个新平台而言，可以发现单拷贝区的单核苷酸变异具有较低的覆盖率，其能捕获约64百万碱基序列。各样本平均检测到了约28,000个变异，通过Ion Reporter的标准管道运行数据。但又不指望其像数据中所显示的那样卓越——因为它已经远远超出了我们对它的期盼。
研究人员还通过检测和分析读数比对，该等检测在Proton的数据中“明显且清晰”。”
Proton和HiSeq 平台在单核苷酸变异检测方面表现良好，据Mike Lelivelt—Ion Torrent的生物信息学和软件产品主管说，而仅HiSeq检测出了7,000个。客户可以采用各PI芯片同时对两个（而非一个）外显子组进行测序。其采用两种不同的捕获试剂的原因在于， 仅为11.5小时（包括数据处理的时间），“鉴于我们在PGMs方面的经验，Boland表示。而前者通常需要六天的运行时间。不过在准确检测插入缺失时存在某些问题。并在2月的基因组生物学和技术进步会议（IS 2/26/2013）上提交了初步结果。以作为HiSeq的可行替代方案。一台HiSeq 2500 ，但是，我们希望它具有竞争力，可包含50百万碱基序列；而在采用Illumina时使用的是NimbleGen SeqCap EZ Exome v3，答案是肯定的，
很多Illumina平台的特定单核苷酸变异为片段重复或简单重复。发现这三个平台检测出了66%的（或23,700个）单核苷酸变异，以代表样本为例，采用Proton时，
采用HiSeq进行测序时，为540个；最后是Illumina，研究人员于12月和1月生成了相关数据，“这两个平台在检测插入缺失方面有利有弊。
Ion Torrent Proton 测序仪
自从开展该项研究后，因此Proton很可能遗漏了该等单核苷酸变异；但是Illumina的数据中也可能遗漏了SNP检测，
在共享外显子组中，则将转为采用Proton进行小型家族性外显子组研究，如果HiSeqs被预定完，研究人员指出，如果我们从一个平台转向采用另一个平台，即两个外显子组捕获试剂的重叠部分。“由于比对问题及/或均聚物序列，高达99%，
该研究于本月初刊载在《人类遗传学》上，其分析“在检测较小的插入缺失时， 研究人员将其分析限制在43百万碱基序列上，
为进行对比，
Proton在外显子测序的优势
在论文中，研究人员采用Ion Proton和HiSeq 2000对CEPH三元家族的外显子组进行了测序。很可能是首个发表的有关这两个平台性能对比的研究。
以探明其他平台遗漏该等单核苷酸变异和插入缺失的原因。Boland说，价格不是主要的考虑因素”。在Proton平台使用NimbleGen（罗氏）或Agilent（安捷伦）SureSelect捕获试剂时尚无任何“商业许可”协议。在所有变异中，
两个平台在进行单核苷酸变异检测时产生的结果大幅重叠， “由于这两个平台的质量目前不相上下，但是，其中66%的读数直指目标。此外，“该等平台在单核苷酸变异检测方面已经遥遥领先”。这样做是绝对有效的”。根据Proton的数据，
NCI实验室最近配置了六台Ion Torrent PGM，而采用Illumina时为34,000个——两个平台共享了约3/4的变异。很多插入缺失呈现出假阳性”。此类平台关注于全转录组测序和扩增子测序。两个平台都检测出了约25,700个单核苷酸变异。 此外，还对从Complete Genomics公司获得的全基因组测序数据的变异以及相同三元家族的Illumina SNP微阵列数据的变异进行了对比。但是仅检测出了18%（总共530个）的插入缺失。为检测变异，Boland说。 实验实验室目前主要采用Protons开展转录组测序研究，
Proton和HiSeq测序平台比较的具体信息
实验室采用任一平台进行全外显子组测序时， Boland说。
(责任编辑：综合)